文獻(xiàn)分享|單細(xì)胞TCR測序:解析腎細(xì)胞癌的免疫組庫特征 |
前言: T細(xì)胞是獲得性免疫反應(yīng)的重要組成部分,其表面受體蛋白(T cell receptors, TCRs)發(fā)揮著識別抗原分子的作用。NGS是解析TCR多樣性的主流技術(shù),對揭示個體獲得性免疫反應(yīng)的奧秘提供了寶貴的技術(shù)支撐。而單細(xì)胞TCR-Seq技術(shù)一方面可以直接獲得單細(xì)胞水平下克隆型的多樣性信息;另一方面也可以直接對α-β鏈配對信息進(jìn)行分析研究。本次分享的文獻(xiàn)就涉及單細(xì)胞TCR-Seq的應(yīng)用。 |
論文基本信息 ·論文題目:Characteristics, dynamic changes, and prognostic significance of TCR repertoire profiling in renal cell carcinoma patients ·發(fā)表雜志:The Journal of Pathology ·發(fā)表時間:2020-03-24 ·DOI:10.1002/path.5396 |
一、研究背景 |
腎細(xì)胞癌(Renal cell carcinoma,RCC)是起源于腎小管上皮的惡性腫瘤,占腎臟惡性腫瘤的 80%~90%。腎細(xì)胞癌的病因尚不明確,其發(fā)病與遺傳、吸煙、肥胖等有關(guān)【1】。 雖然RCC被認(rèn)為是一種高度免疫原性的癌癥,但是免疫抑制時常發(fā)生。本文作者通過單細(xì)胞免疫組庫,基于SMART技術(shù)和微流控技術(shù),探究了RCC發(fā)展不同階段和治療前后腎癌的外周T細(xì)胞的TCRB的多樣性的變化,并分析了TCRB多樣性和RCC的動態(tài)關(guān)系。 |
二、分析思路 |
★ 研究方法 |
·為了研究TCRB的特征,首先從45例RCC患者和2例良性腎病患者獲取87個PBMC樣本,然后提取RNA并構(gòu)建了基于SMART技術(shù)的TCRB測序文庫。共獲取到了10,072,661個TCRB克隆型,其中包括術(shù)前TCRB樣本115,428±62,953(平均±SD)個和術(shù)后TCRB樣本136,388±48,815(平均±SD)個。這里作者使用SMARTer Human scTCR a/b Profiling Kit構(gòu)建單細(xì)胞TCRB文庫。其中64個V基因和13個J基因均被檢測到,并認(rèn)為這種方法定量TCRB克隆型豐度是可行的。 ·為了解析TCRB多樣性的意義,對28例患者術(shù)前和術(shù)后的56個PBMC樣本進(jìn)行了轉(zhuǎn)錄組測序。 ·為了驗證結(jié)果,對一例晚期腎細(xì)胞癌患者的樣本進(jìn)行了單細(xì)胞RNA測序(scRNA,微流控方法)。 |
★ 研究發(fā)現(xiàn) |
·TCRB的多樣性和Native T細(xì)胞數(shù)量呈正相關(guān)(特別是CD4-和CD8-幼稚性T細(xì)胞)。接下來,選取162個與TCRB多樣性正相關(guān)的基因進(jìn)行GO分析,其中前20個terms主要是與生物合成與代謝過程有關(guān) ;相反,GO分析結(jié)果顯示TCRB多樣性負(fù)相關(guān)的基因與炎癥反應(yīng)和凝血過程有關(guān),特別是嗜中性粒細(xì)胞和血小板的激活。 ·結(jié)果顯示,不同的腫瘤負(fù)荷對患者免疫狀態(tài)產(chǎn)生不同的影響,四種類型的T細(xì)胞多樣性指標(biāo)一致表明良性和I期RCC患者的術(shù)前TCRB多樣性要顯著高于IV期患者; ·通過手術(shù)緩解了大多數(shù)腫瘤負(fù)荷后,IV期患者的TCRB多樣性顯著增加。結(jié)果表明,循環(huán)TCRB庫能反映患者的免疫狀態(tài)并預(yù)測預(yù)后。而且通過細(xì)胞減少腎切除術(shù)(cytoreductive nephrectomy, CN)在一定程度上減輕了晚期患者的免疫系統(tǒng)負(fù)擔(dān),可能為免疫治療提供良好的機(jī)會。 |
使用的Takara產(chǎn)品:SMARTer Human scTCR a/b Profiling Kit |
■ 靈敏度高—整合SMART技術(shù)與5’RACE技術(shù),可捕獲TRA和TRB基因完整的V(D)J可變區(qū),用于后續(xù)NGS分析 |
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■ 易于使用—優(yōu)化的index允許將96個細(xì)胞混合制成12個文庫,并可以進(jìn)一步混合在一個flow-cell lane中測序 |
實驗孔板布局 |
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孔板外的陰性/陽性對照組用于測序文庫的質(zhì)量評估,孔板內(nèi)的陰性/陽性對照孔用于克隆型鑒定分析時的閾值設(shè)定以及對潛在交叉污染的評估。嚴(yán)格的質(zhì)控只為更好的測序結(jié)果。 |
添加SMART-Seq Indexed Oligo減少PCR偏差 |
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單細(xì)胞測序中涉及的文庫數(shù)量更多,將每個單細(xì)胞文庫做好標(biāo)記對下游數(shù)據(jù)分析工作而言至關(guān)重要。通過SMART-Seq Indexed Oligo,可以在轉(zhuǎn)錄本cDNA第一鏈合成時,為同一細(xì)胞來源的轉(zhuǎn)錄本添加相同“身份標(biāo)簽”—— cell barcode。這樣,孔板中同一列的8個細(xì)胞樣品都有了自己的“身份標(biāo)簽”,將它們制備成12組混合文庫進(jìn)行V(D)J區(qū)序列的擴(kuò)增,并添加上只屬于自己組內(nèi)的index標(biāo)簽序列。 |
■ 特異性好—完整reads,大部分reads可以比對到目標(biāo)區(qū)域,提供準(zhǔn)確鏈配對信息 |
實驗案例 |
分選到96孔板中的CD4+ T細(xì)胞參照實驗手冊標(biāo)準(zhǔn)流程進(jìn)行文庫構(gòu)建。使用Miseq測序儀進(jìn)行測序,雙端2×300 bp reads,600 cycles。測序數(shù)據(jù)分析中,8種SMART-Seq Indexed Oligo的拆分工作通過配套的 Human scTCR Demultiplexer軟件可輕松完成。軟件下載即用,無需安裝。進(jìn)一步的序列比對、克隆型分析通過開源軟件MiXCR完成。 |
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(數(shù)據(jù)來源于Takara Bio USA, Inc.) |
至少一條TCR鏈得到鑒定的比例是92%(81/88孔),α/β克隆型的鑒定比例是65%(57/88孔),同時鑒定到α和β鏈的克隆型比例是73%(64/88孔)。 |
寫在最后,直接用于測序的文庫構(gòu)建流程、高效的混合測序策略、易用的數(shù)據(jù)分析軟件,SMARTer Human scTCR a/b Profiling Kit幫助您快速上手單細(xì)胞TCR-Seq,獲得高質(zhì)量數(shù)據(jù)! |
參考信息: |
【1】 腎癌診療指南(2022年版) |
頁面更新:2022-08-25 08:51:28